一、气相色谱仪测定亚麻酸、EPA、DPA和DHA的含量的原理：
试样经酸水解后提取脂肪，其中α-亚麻酸、二十碳五烯酸（EPA）、二十二碳五烯酸（DPA）、二十二碳六烯酸（DHA）经酯交换生成甲酯后，通过气相色谱仪分离检测，以保留时间定性，外标法定量。
二、气相色谱仪测定亚麻酸、EPA、DPA和DHA的含量的试剂和材料：
2.1氢氧化钾（KOH）。
2.2盐酸（HCl）。
2.3无水乙醚（C2H5OC2H5）。
2.4乙醇（CH3CH2OH）：体积分数≥95％。
2.5石油醚：沸程30℃～60℃。
2.6正己烷（CH3(CH2)4CH3）：色谱纯。
2.7甲醇（CH3OH）：色谱纯。
2.8无水硫酸钠（Na2SO4）。
2.9试剂配制：:氢氧化钾甲醇溶液（0.5mol/L）：称取2.8g氢氧化钾，用甲醇溶解并定容至mL，混匀。
三、气相色谱仪测定亚麻酸、EPA、DPA和DHA的含量的标准溶液：
3.1标准品：
3.1.1α-亚麻酸甲酯(C19H32O2)：纯度≥99.0％。
3.1.2EPA甲酯(C21H32O2)：纯度≥98.5％。
3.1.3DPA甲酯(C23H36O2)：纯度≥98.0％。
3.1.4DHA甲酯(C23H34O2)：纯度≥98.5％。
3.2标准溶液的配制：
3.2.1单个脂肪酸甲酯标准储备液(4.0mg/mL)：称取.0mgα-亚麻酸甲酯、EPA甲酯、DPA甲酯、DHA甲酯标准物质于25.0mL容量瓶中，分别用正己烷溶解并定容至刻度，摇匀。此溶液应贮存于-18℃冰箱中。
3.2.2脂肪酸甲酯混合标准中间液（1.0mg/mL）：分别吸取脂肪酸甲酯标准储备液2.50mL于10.0mL容量瓶中，摇匀，亦为标准曲线最高浓度，临用时配制。
3.2.3脂肪酸甲酯标准工作液：分别吸取脂肪酸甲酯中间液0.40mL、0.80mL、1.0mL、2.0mL、4.0mL于10.0mL容量瓶中，用正己烷定容，此浓度即为0.mg/mL、0.mg/mL、0.10mg/mL、0.20mg/mL、0.40mg/mL的标准工作液，临用时配制。
四、气相色谱仪测定亚麻酸、EPA、DPA和DHA的含量的分析步骤：
4.1试样制备：
4.1.1试样处理：
4.1.1.1固体试样：称取已粉碎混合均匀的待测试样0.5g～2g（精确到0.g）（含待测组分约5mg/g～10mg/g）加入50mL比色管中，加8mL水，混匀后再加10mL盐酸。
将比色管放入70℃～80℃水浴中，每隔5min～10min以涡旋混合器混合一次，至试样水解完全为止，约需40min～50min。取出比色管，加入10mL乙醇，混合。冷却至室温后将混合物移入mL具塞量筒中，以25mL无水乙醚分次洗比色管，一并倒入量筒中。
密塞振摇1min。加入25mL石油醚，密塞振摇1min，静置30min，分层，将吸出的有机层过无水硫酸钠（约5g）滤入浓缩瓶中。再加入25mL无水乙醚密塞振摇1min，25mL石油醚，密塞振摇1min，静置、分层，将吸出的有机层经过无水硫酸钠（约5g）滤入浓缩瓶中，按“再加入25mL无水乙醚……，静置、分层、过无水硫酸钠”重复操作一次，将全部提取液用旋转蒸发仪于45℃减压浓缩近干。用正己烷少量多次溶解浓缩物，转移至25mL容量瓶并定容，摇匀。按4.1.2步骤甲酯化处理。
4.1.1.2油类制品：称取混合均匀的油类制品0.2g～1g（精确到0.g）（含待测组分约10mg/g～20mg/g。）至25mL容量瓶中，加入5mL正己烷轻摇溶解，并用正己烷定容至刻度，摇匀。按4.1.2步骤甲酯化处理。
4.1.2甲酯化
吸取待测液（4.1.1.1，4.1.1.2）2.0mL至10mL具塞刻度试管中，加入2.0mL氢氧化钾甲醇溶液，立即移至涡旋混合器上振荡混合5min，静置5min，加入6mL蒸馏水，上下振摇0.5min，静置分层后，吸取下层液体，弃去后再反复用少量蒸馏水进行洗涤，并用吸管弃去水层，直至洗至中性（若有机相有乳化现象，以r/min离心10min），吸取正己烷层待上机测试用。
五、气相色谱仪测定亚麻酸、EPA、DPA和DHA的含量的色谱条件：
色谱柱:键合交联聚乙二醇固定相，柱长30m，内径0.32mm，膜厚0.5m或同等性能的色谱柱。
柱温箱温度：起始温度℃，10℃/min升温至℃，再以8℃/min升温至℃，保持13min。
进样口温度：℃；进样量1L，分流比20∶1。
FID检测器温度：℃。
载气：高纯氮气，流量1.0mL/min，尾吹25mL/min。
氢气：40mL/min；空气mL/min。
六、气相色谱仪测定亚麻酸、EPA、DPA和DHA的含量的结果计算：